Nicolas Creusot
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**PhD. Nicolas Creusot**
Adresse : 63 allée Serr, appartement 49
33100 Bordeaux
France
Mobile: +33 672982573
Email : nicolascreusot@neuf.fr
Naissance : 4 Juin 1984 (36 ans)
Nationalité: Française
Langues: Français, Anglais (lu et parlé), Allemand (notion)
Permis B et Permis bateau côtier
**EXPÉRIENCE PROFESSIONNELLE**
***2019-actuel:* INRAE,** Unité de recherché EABX 1454, équipe ECOVEA (France, Bordeaux, 33)
***Titulaire*** - **Ch****argé de recherche en écotoxicologie & métabolomique**. Développement d’approches en métabolomique environnementale pour caractériser la réponse et l’adaptation des organismes aquatiques à la pression chimique dans le contexte du changement global.
***2017- 2019 :* EAWAG**, Department of Environmental chemistry (Suisse, Dübendorf (ZH))
***24 mois -* Post-Doctorat**: Projet EXPOZOL, EXPOsure of aquatic ecosystems to antifungal aZOLes: Assessment of occurence and fate in sediment, water and aquatic organisms
(Marie Skłodowska-Curie Actions -Individual Fellowships, H2020-MSCA-IF-2016)
*Caractérisation de la distribution et de la dynamique des azoles antifongiques dans les compartiments aquatiques (colonne d’eau, sédiment, biote) ; Identification des produits de biotransformation à différents niveaux trophiques ; Caractérisation de la toxico-cinétique et de la toxicodynamique pour l’établissement de modèles prédictifs (TK-TD) ; Évaluation du danger des azoles antifongiques environnementaux (i.e. composés individuels et mélanges environnementaux).*
***2016-2017 :* INSERM**, IRCM UMR 1194 (France, Montpellier, 34)
***18 mois -* Post-Doctorat :** Etude des différences inter-espèces entre l’Homme et le poisson zèbre dans l’activation des récepteurs nucléaires par les polluants environnementaux
*Développement et validation de nouveaux modèles cellulaires à gênes rapporteurs (transitoires et stables) ; Application à l’évaluation du danger des substances et à la surveillance des milieux aquatiques* ; *Approche structurale pour la compréhension des différences inter-espèces (collaboration CNRS-CBS); Caractérisation de l’activation synergique du PXR et des réponses physiologiques associées (expression de gènes, prolifération).*
***2012-2016 :*** **NERIS**, Unité Écotoxicologie *in vitro* et *in vivo* (France, Verneuil en Halatte, 60)
***4 ans -* Post-Doctorat.** Développement de l’activité bio-analytique appliquée à la surveillance de la qualité chimique des milieux aquatiques.
*Évaluation de l’opérationnalité de la démarche bio-analytique pour la surveillance en routine de la qualité chimique des milieux aquatiques et les performances épuratoires en station de traitements des eaux usées ; Standardisation des outils bio-analytiques et de la mesure de l’activité oestrogénique dans les eaux de surfaces ; Évaluation de nouveaux outils biologiques basés sur le poisson zèbre pour la caractérisation de la contamination des milieux aquatiques et du danger écotoxicologique associé.*
***2008-2011 :* Université Bordeaux** **I** (France, Talence, 33) / **INERIS** (France, Verneuil en Halatte, 60)
***3ans -*** Thèse de doctorat : **« Contribution de l’approche *effect directed analysis* à l’identification des perturbateurs endocriniens dans les milieux aquatiques** ». Sous la direction de Selim Aït-Aïssa (INERIS) et de Hélène Budzinski (Université Bordeaux I).
*Développement et mise en œuvre d’une approche combinant outils biologiques et outils physico-chimiques pour la caractérisation de la contamination des milieux aquatiques par les perturbateurs endocriniens et leur identification.*
***2008 :* INERIS**, Unité Écotoxicologie *in vitro* et *in vivo* (France, Verneuil en Halatte, 60)
***2 mois -* Ingénieur de recherche intérimaire**. Réalisation de tests *in vitro* dans le cadre du plan national PCB
*Mise en œuvre d’outils in vitro pour la caractérisation de la contamination des milieux aquatiques par des composés dioxine-like**.***
**COMPÉTENCES**
***Outils physico-chimiques***
\- Échantillonnage de matrices environnementales : sédiment, eau de surface, échantillonneurs passifs (POCIS et SPMD) et d’organismes aquatiques (e.g. copépodes, gammares)
\- Extraction par fluide pressurisé (ASE®- Extraction accélérée par solvant), SPE (Extraction sur Phase solide), QUECHERS (SPE dispersive) et extraction liquide/liquide
\- Fractionnement d‘extraits organiques complexes par chromatographie liquide (RP-HPLC-DAD, SPE et exclusion stérique).
\- Analyses ciblées par chromatographie en phase gazeuse et liquide avec détection par spectrométrie de masse simple ou en tandem (CG-SM, CL-SM, UHPLC-SM/SM) ou par capture d’électron (CG-ECD).
\- Analyses non-ciblées (empreinte et analyse de tendance ; élucidation structurale) et de suspects (utilisation de base de données) par couplage chromatographie en phase liquide et spectrométrie de masse hybride à haute résolution (HRMS) de type Orbitrap® (e.g. Q-exactive-PLUS, LUMOS) et Q-TOF. Application à la métabolomique environnementale.
***Outils biologiques & biochimiques***
\- Entretien, utilisation et développement de lignées cellulaires (humaines et poissons) à gènes rapporteurs (luciférase) pour la détection de perturbateurs endocriniens dans des matrices complexes ; Détermination d’hormone-équivalent (TEQ) ; Mesure de la cytotoxicité et la prolifération cellulaire (test MTT, bleu alamar) ; Automatisation des tests *in vitro* (Freedom Evo75, TECAN® ; Biomek 3000, Beckman).
\- Utilisation de bioessais *in vivo* : larves de poisson zèbre transgéniques (gène rapporteur GFP) et sauvages pour la détection de perturbateurs endocriniens ; suivi du cycle de vie d’un microcrustacé (*Eurytemora affinis*) en conditions contrôlées et mesure de l’activité enzymatique acetylcholine estérase.
***Outils de biologie moléculaire***
\- Utilisation de colonnes greffées avec des récepteurs nucléaires pour l’isolement de ligands de ces récepteurs au sein d’échantillons complexes.
\- Électrophorèse en gel de polyacrylamide.
\- Clonage de récepteurs nucléaires à partir de cellules ou d’embryon de poisson zèbre et construction de plasmides pour le développement de modèles *in vitro* à gène rapporteur.
\- PCR, Q-PCR.
\- Spectrométrie de masse haute résolution appliqué à la métabolomique
***Outils informatiques :***
\- Compound Discoverer 2.1et Trace Finder 4.1: Maitrisés
\- MassLynx, MassHunter et Mass profiler : Notion
\- EnviMass, Metfrag, Sirius, W4M: Maitrisés
\- Analyse statistique sous R : analyses multivariées (e.g. HCA, PCA, Trends analysis) : Maitrisés
\- ArcGIS : notion
**ENCADREMENTS & ENSEIGNEMENTS**
***Enseignements à l’Université***
Université pharmacie de Montpellier : Master d’ingénierie de la santé : 2016 et 2017 (3h/an)
Université Paris V : Master de pharmacologie et toxicologie : 2013, 2014 et 2015 (2h/an)
***Encadrement d’étudiants en Master***
Master Thesis (Université de Zurich, ETH): 2018 (4 mois)
Master 2 : 2012 (6 mois), 2014 (6 mois), 2015 (6 mois) et 2018 (6 mois)
Master 1 : 2011 (3 mois), 2019 (4 mois)
***Co-encadrement d’étudiants en thèse***
*- In vitro* and *in vivo* assessment of endocrine disrupting effects of aquatic contaminants alone or in mixture, Hélène Serra (2014-2017), Université de Bordeaux (FP7-SOLUTION)
\- Zebrafish-based *in vitro* and *in vivo* reporter gene assays for assessing endocrine active chemicals, Manoj Sonavane (2012-2015), Université AgroParisTech (Paris) (ITN-EDA-EMERGE)
**RÉCOMPENSES**
**2014** Award for innovative technique for the environment for the work on “Effect directed analysis, an integrative approach for the identification of toxicants in the environment”. *(LPTC/INERIS)* *Pollutec ADEME*
**2010** Analytical Bio-analytical Chemistry - Best paper award (2d in 2009)
**PARTITIPATION À DES PROJETS DE RECHERCHE FRANÇAIS ET EUROPEENS**
### ***Projet Européen :***
Marie Skłodowska-Curie Actions -Individual Fellowships **EXPOZOL** project (Call: H2020-MSCA-IF-2016, 2017-2019). EXPOsure of aquatic ecosystems to antifungal aZOLes: Assessment of occurence and fate in sediment, water and aquatic organisms. Co-responsable du projet.
Marie Curie Initial training network **EDA-EMERGE** project (Call: FP7-PEOPLE-2011-ITN, 2011-2015): Innovative biodiagnosis meets chemical structure elucidation - Novel tools in effect directed analysis to support the identification and monitoring of emerging toxicants on a European scale. Coord.: W. Brack (UFZ, Leipzig, Germany). Impliqué en tant que partenaires dans les workpachage WP1 (bio-analytical tools), WP5 (European demonstration program), WP6 (higher tier EDA study) et WP7 (courses).
**SOLUTIONS** project (FP7-ENV-2013-two-stage, 2013-2018): SOLUTIONS for present and future emerging pollutants in land and water resources management. Coord.: W. Brack (UFZ, Leipzig, Germany). Impliqué en tant que partenaires dans les workpachage WP-T4 (Effect based tools), WP-T3 (effect directed analysis); Participant aux WP C1 (Danube river basin) et WP C2 (assessment of abatement options in the River Rhine catchment).
Science Policy Interface (**SPI**). Effect-based and chemical analytical monitoring for the steroidal estrogens: An international project to cope with a monitoring challenge. Coord.: R. Kase and M. Carere. Participation au réunion de travail et à l’étude inter-laboratoire sur la mesure d’oestrogénécité en 2013-2014.
**JRC project** (2013). Testing comparability of existing and innovative bioassays for water quality assessment: an European-wide exercise. Coord.: R. Carvalho (JRC, Ispra, Italy). Impliqué dans l’évaluation des activités de perturbations endocrines in vitro.
### ***Projet Français :***
Projet **MICROPOLIS** (2014-2016): Evaluation de traitements avancés pour l’élimination des micropolluants à la station de traitement des eaux usées de Sophia Antipolis. Co-responsable de tache: Caractérisation de l’activité de perturbation endocrine des eaux usées à partir de bioessais in vitro basés sur le mécanisme d’action et identification de composés actifs à travers l’analyse dirigée par l’effet. (co-financement ONEMA-INERIS).
Projet **REGARD** (2014-2018): Réduction et gestio des micropolluant sur le bassin versant de Bordeaux. Participation à la tâche 3.1 – évaluation de l’impact des micropollutants par l’utilisation de bioessais in vitro et de l’analyse dirigée par l’effet (co-financement ONEMA-INERIS).
Action **ONEMA** ((2013-2015). Développement et utilisation d’outils bio-analytiques pour le contrôle de surveillance et d’enquête de la qualité chimique des milieux aquatiques dans le cadre de la directive cadre sur l’eau. Co-responsable de l’action “approche bio-analytique pour l’identification de contaminants émergents dans les systèmes aquatiques: application aux sédiments de l’étude prospective 2012. (co-financement ONEMA-INERIS).
**Etude prospective sur les contaminant émergents** (2011-20012), financée par l’ONEMA et le ministère français de l’écologie et du développement durable. Co-responsable de la tâche “outil biologique”
**Action AQUAREF** (2013-2015): Approche bio-analytique: Validation de la mesure d’oestrogénécité dans les matrices environnementales. Co-responsible de l’action.
Projet **ANR-PROOFS** (2013-2016): Occurrence and Effect of environmental progesterone receptor ligands on fish reproduction and neurodevelopment. Co-responsable du WP5 – Bioanalyse des matrices environnementales et identification des composés actifs sur le récepteur de la progestérone
Projet **ANR- ECHIBIOTEB** (2011-2015). Innovative sampling, chemical and biological tools for monitoring of wastewater and sludge innovative treatments. Co-responsable de la tâche “bioessais in vitro” et “analyse dirigée par l’effet”
Publications
Bioaccumulation des pesticides organiques dans les biofilms de rivièreQuae. Pesticides en viticulture. Usages, impacts et transition agroécologique, Quae, pp.137-165, 2023, Savoir faire, 978-2-7592-3600-8. ⟨10.35690/978-2-7592-3601-5⟩
Book sections
hal-03943260v1
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Contribution de l'approche effect directed analysis à l'identification de perturbateurs endocriniens dans les milieux aquatiquesChimie analytique. Université de Bordeaux 1, 2011. Français. ⟨NNT : ⟩
Theses
tel-02980485v1
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